书城医学病理技术手册
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第11章 神经组织(2)

(4)蒸馏水清洗;

(5)碳酸锂溶液单张分化切片30秒;

(6)继续用70%酒精分化直至灰质清晰、白质明显可辨;

(7)显微镜下观察,如有必要,从第5步开始反复分化;

(8)分化结束后,置于蒸馏水中;

(9)当所有切片进入蒸馏水后,加入新鲜蒸馏水;

(10)坚牢焦油紫溶液复染6分钟,复染还可选用苏木素—伊红和PAS法;

(11)95%酒精清洗2次;

(12)继续用纯酒精脱水2次,二甲苯透明2次,每次均为2分钟;

(13)树脂封固。

5.结果

髓鞘,包括磷脂 蓝—绿色

细胞及细胞产物粉红—紫色

坚牢蓝染色可与其他染色,如鲍地安·穴Bodiamd’s)法同时进行。

八、Woelche氏髓鞘染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片石蜡,20微米。

3.试剂

2.5%硫酸铁铵溶液(见第15章)

10%酒精苏木素贮存液(见第15章)

饱和碳酸锂溶液

碳酸锂1.54克

蒸馏水99毫升

苏木素工作液?穴按下面列出之顺序将下列试剂混合

蒸馏水45毫升

10%酒精苏本素贮存液,过滤 10毫升

饱和碳酸锂溶液,过滤 7毫升

蒸馏水45毫升

务必按上述顺序混合,不得摇动。

4.步骤

(1)脱蜡至蒸馏水;

(2)2.5%硫酸铁铵溶液中过夜;

(3)蒸馏水清洗2次;

(4)苏木素工作液染2小时;

(5)80%酒精分化直至背景无色;

(6)95%酒精和纯酒精各脱水2次,每次2分钟;二甲苯透明2次,每次2分钟;

(7)树脂封固。

5.结果

髓鞘、核 黑色

胶质细胞黑色

背景无色

九、显示异染性白质营养不良的Hirch-Peiffel染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片石蜡,12~20微米。

3.试剂

0.04%焦油紫贮存液

焦油紫V0.04克

蒸馏水85毫升

冰醋酸15毫升

15%三乙醇胺溶液

三乙醇胺15毫升

蒸馏水85毫升

焦油紫—三乙醇胺工作液

取等量焦油紫V贮存液与15%三乙醇胺液混合?穴如:各取100毫升)。

4.步骤

(1)脱蜡至蒸馏水;

(2)将焦油紫—三乙醇胺工作液在60℃烘箱中预热l小时;

(3)用预热的焦油紫—三乙醇胺溶液在60℃烘箱中染10分钟;

(4)取出烘箱,冷却至室温?穴20℃~25℃);

(5)切片移至蒸馏水;

(6)蒸馏水清洗2次,每次5分钟;

(7)甘油明胶封固。

5.结果

异常硫酸脑苷脂棕色

其他结构蓝—棕色

十、髓鞘和胶质纤维的磷钨酸苏木素染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林。

2.切片石蜡,6微米。

3.试剂

磷钨酸苏木素溶液

苏木素1克

磷钨酸20克

蒸馏水100毫升

将苏木素和磷钨酸分别溶解于蒸馏水中,加热可促使苏木素溶解,待其冷却后,即可与溶解于蒸馏水中的磷钨酸混合,不需防腐剂,溶液通常需数周成熟,但加入0.2克高锰酸钾可使染液即时成熟,加入新鲜配制之1%高锰酸钾溶液20毫升亦可使其即时成熟。

0.25%高锰酸钾溶液 (见第15章)

卢戈氏(1ugoI’s)碘液(见第15章)

5%草酸溶液(见第15章)

2.5%重铬酸钾贮存液(见第15章)

2.5%重铬酸钾工作液

2.5%重铬酸钾溶液 95毫升

冰醋酸 5毫升

4.步骤

(1)脱蜡至蒸馏水;

(2)重铬酸钾工作液氧化切片,过夜;

(3)自来水清洗15分钟;

(4)卢戈氏碘液15分钟;

(5)95%酒精去碘1小时,换几次95%酒精,使棕色的 碘去掉;

(6)蒸馏水快速清洗3次;

(7)0.25%高锰酸钾氧化5分钟;

(8)蒸馏水快速清洗3次;

(9)5%草酸5分钟;

(10)蒸馏水快速清洗3次;

(11)磷钨酸苏木素液内染色,过夜;

(12)95%酒精清洗以去除过染;

(13)纯酒精快速脱水3次;

(14)二甲苯透明3次,每次3分钟;

(15)树脂封固。

5.结果

核、髓鞘、胶质细胞突起 蓝色

胞浆 水红

十一、Penfield氏少突胶质和小胶质细胞联合染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林,福尔马林溴化铵。

2.切片冷冻,15~20微米。

3.试剂

福尔马林溴化铵溶液

37%~40%甲醛 15毫升

溴化铵2克

蒸馏水85毫升

5%氢溴酸溶液 (见第15章)

5%碳酸钠溶液 (见第15章)

10%硝酸银溶液(见第15章)

浓氢氧化铵

Hortega’s碳酸银溶液

10%硝酸银水溶液5毫升

5%碳酸钠水溶液 20毫升

一滴一滴地加入28%氢氧化铵,用力振荡,加入足量的氢氧化铵,使生成之沉淀物溶解,加蒸馏水至75毫升。

1%福尔马林溶液 (见第15章)

1%氯化金贮存液 (见第15章)

5%硫代硫酸钠溶液 (见第15章)

4.步骤

(1)将福尔马林固定的组织放入福尔马林溴化铵液内3~5天;

(2)将组织切片裱在干净的有标记的玻片上,彻底干燥;

(3)放入加有10~15滴氢氧化铵的蒸馏水中,过夜,以去除微量福尔马林;

(4)转至氢溴酸溶液,37℃烘箱中1小时;

(5)取出烘箱,蒸馏水洗3次;

(6)碳酸钠溶液处理l小时,切片可保留在碳酸钠溶液中,无有害影响;

(7)将碳酸银溶液倒在切片上,反应3~5分钟。用显微镜监测胶质细胞及其突起的浸染情况,切片放上显微镜载物台之前应擦拭切片的背面。如果必要,可用碳酸银溶液再次处理切片;

(8)放入l%福尔马林液中直至切片呈一致的灰色,轻轻地摇动染色缸;

(9)蒸馏水彻底清洗;

(10)氯化金溶液着色,直至切片为蓝—灰色;

(11)蒸馏水彻底清洗;

(12)硫代硫酸钠溶液固定30~45秒;

(13)蒸馏水清洗;

(14)95%酒精和纯酒精各脱水2次,每次2分钟;二甲苯透明2次,每次2分钟;

(15)树脂封固。

5.结果:

少突胶质细胞和小胶质细胞黑色

背景棕—黄色

十二、Holzer氏胶质纤维染色法

1.固定10%中性缓冲福尔马林或甲醛酒精。

2.切片石蜡,6微米。

3.试剂

磷钼酸—酒精溶液

0.5%磷钼酸50毫升

95%酒精100毫升

新鲜配制。

纯酒精—氯仿溶液

100%酒精 40毫升

氯仿160毫升

注意通风,勿吸入氯仿蒸气。

结晶紫溶液

结晶紫5克

100%酒精 20毫升

氯仿80毫升

溴化钾溶液

溴化钾10克

蒸馏水100毫升

一次配制1000毫升该溶液较为经济,即100克溴化钾溶于1000毫升蒸馏水中。

分化液

苯胺120毫升

氯仿180毫升

28%氢钒化铵 20滴

使用苯胺时勿接触皮肤。

4.步骤

(1)脱蜡至蒸馏水;

(2)磷钼酸酒精溶液内3分钟;

(3)滴干切片;

(4)倒上酒精—氯仿溶液,保持至切片变为半透明状;

(5)将切片放在染色架上,结晶紫溶液淹没切片染30秒,吸干切片,如果切片上有结晶紫沉淀形成,可用未稀释的苯胺除去;

(6)将切片放回染色架;

(7)溴化钾溶液淹没切片1分钟,吸干;

(8)放入分化液内30秒,如果切片过度分化则重新染色;

(9)二甲苯清洗和透明数次,换第一次二甲苯时用显微镜检查切片;

(10)树脂封固。

5.结果

胶质细胞和纤维深紫色

背景淡紫色

十三、Cajal氏星形细胞升汞金染色法

1.固定福尔马林溴化铵。

2.切片冷冻,15~30微米。

3.试剂

福尔马林溴化铵溶液

37%~40%甲醛15毫升

溴化铵2克

蒸馏水85毫升

Cajal氏升汞金溶液

二氯化汞结晶0.5克

1%棕色氯化金水溶液 6毫升

蒸馏水35毫升

储存于棕色瓶内。

5%硫代硫酸钠溶液 (见第15章)

Hortega氏石炭酸—二甲苯杂酚油混合液

杂酚油10毫升

苯酚结晶,熔化 10毫升

二甲苯80毫升

4.步骤

(1)冷冻切片?熏入蒸馏水;

(2)切片平放入新鲜配制的升汞氯化金溶液内4~6小时;室温,置于暗处;

(3)用显微镜观察一张样片,应转变为紫色;

(4)蒸馏水洗5~10分钟;

(5)硫代硫酸钠溶液内5~10分钟;

(6)蒸馏水充分洗数次;

(7)将单张切片逐一漂捞至干净载片上;

(8)空气干燥;

(9)以95%酒精开始脱水;

(10)石炭酸—二甲苯杂酚油混合液透明,或用95%酒精;纯酒精和二甲苯脱水与完全透明各2次,每次2分钟;

(11)树脂封固。

5.结果

星形细胞及突起黑色

神经细胞淡红色

神经纤维不着色

背景透明到浅棕—紫色